川楝子提取物中川楝素在大鼠体内的药代动力学研究

来源:公文范文 发布时间:2022-12-31 13:00:04 点击:

zoޛ)j馒1/IrX󎦛]4mM5Ӊyf~yf~yN/n<ט?
 H?�Km5mx?w?M9>tӒ1/KiQ^ngngngngn@)))))׮mtM}G4mti>()޶',rhǧu)Ӣ֧rاlXP&)XFB)nRފv쥑8)dp
'nYFa)]F.j7jfz{h|Zf^I(~)bjם)֥()޶'?&yzX,zwZ]wmx׿^ii_餰M4/m T#ېjh+Pu2)ejC"*h]-ky"https://www.minidv50.com/k/duizhao/" target="_blank" class="keylink">对照品(上海源叶生物,批号:Z11N7B24613,纯度>98%);对乙酰氨基酚对照品(中国药品生物制品检定所,批号:100018-200408);甲醇、乙腈为色谱纯;其余试剂均为分析纯。

1.3 实验动物

清洁级健康雄性SD大鼠,8~12周,体重为250 g,购买于第四军医大学实验动物中心[合格证号:SCXK(军)2007-007],通过动物伦理学审核,饲养条件:室温(25±2)℃,相对湿度为(50±10)%,每天交替12 h光照,自由饮水。

1.4 溶液的配置

1.4.1 川楝素储备液及工作液的制备  精密称取川楝素对照品3.06 mg,置于10 mL棕色容量瓶中,加甲醇溶解定容至刻度,即得306 μg/mL的储备液;取川楝素储备液适量,甲醇稀释成浓度为10.2、102.0、204.0、408.0、816.0、1224.0、1632.0、3060.0 ng/mL系列工作液用于标准曲线样品的制备,另取适量储备液制备成浓度为30.6、1224.0、2040.0 ng/mL的低、中、高质量浓度的质控样品。

1.4.2 内标储备液及工作液的制备  精密称取对乙酰氨基酚对照品4.13 mg,置于10 mL棕色容量瓶中,加甲醇溶解定容至刻度,即得413 μg/mL的对乙酰氨基酚储备液。取内标储备液适量,加甲醇稀释成浓度为2070 ng/mL内标工作液。

1.5 检测条件

色谱条件:ZORBAX Eclipse Plus C18色谱柱(4.6 mm×100 mm,3.5 μm),柱温25℃,流动相:乙腈-0.01%甲酸溶液(梯度洗脱,0~4 min:乙腈5%~55%;4~6.5 min:乙腈55%;6.5~9 min:乙腈55%~5%),流速:0.6 mL/min,进样体积:5 μL。质谱条件:扫描方式为多反应检测扫描(MRM);离子化方式为电喷雾离子源(ESI);喷雾电压:3500 V;毛细管温度:350℃;负离子模式:川楝素:m/z573.3→m/z 531.3,碰撞能(CE)为 -25 eV;去簇电压(DP)为-116 eV,对乙酰氨基酚(内标):m/z 150.1→m/z 107.0,CE:-27 eV,DP:-64 eV,见图1。

1.6 实验分组及处理

1.6.1 实验分组和样品采集  取雄性SD大鼠24只,按体重随机分为三组,每组8只。给药前12 h禁食不禁水,分别按照15、30、60 g生药/kg(川楝素剂量为330、660、1320 μg/kg)灌胃大鼠川楝子提取物,给药后0、0.083、0.167、0.25、0.5、1、2、4、6、8、12、24 h眼眶静脉丛取血0.25 mL,4℃,12 000 r/min离心10 min离心半径5 cm,上清液(血浆样品)-20℃储存备用。

1.6.2 样品处理方法  精密吸取血浆样品100 μL,加入10 μL内标液,2500 r/min涡旋5 min使混匀,再加入400 μL甲醇,2500 r/min涡旋5 min,静置3 min,离心(12 000 r/min,4℃,10 min离心半径)取上清至1.5 mL EP管中,减压抽干,残渣加100 μL复溶液(50%乙腈-0.01%甲酸),2500 r/min涡旋5 min复溶,离心(12 000 r/min,4℃,10 min离心半径5 cm)取上清液,进LC-MS测定。

2 结果

2.1 专属性实验

取空白血浆,加川楝素供试品,加内标和川楝素供试品,给药后血浆加内标样品,按“1.6.2”项下方法,处理样品,进样测定。空白血浆无干扰,川楝素为双峰,依据药典以双峰之和计算。见图2。

2.2 线性关系考察

制备川楝素浓度分别为1.02、10.20、20.40、40.80、81.60、122.40、163.20、306.00 ng/mL的血浆样品,加10 μL内标液,处理后测定。测得的川楝素与内标峰面积的比值Y对浓度(X)进行加权回归(x-1)得回归方程为Y = 0.0185 x + 0.0162(r = 0.9953),川楝素血药浓度在1.02~306 ng/mL范围内线性良好,最低定量限为1.02 ng/mL。

2.3 精密度与准确度

制备川楝素浓度为3.06、122.40、204.00 ng/mL的血浆样品各6份,处理后连续进样6次,得日内精密度,连续进样6天,得日间精密度,精密度和准确度均符合要求。见表1。

2.4 提取回收率和基质效应

制备川楝素浓度为3.06、122.40、204.00 ng/mL的血浆样品各6份,进样分析,以加入量和测得量计算提取回收率。配制川楝素低、中、高浓度分别为3.06、122.40、204.00 ng/mL的甲醇溶液各6份;川楝素浓度为3.06、122.40、204.00 ng/mL的血浆样品各6份,处理后测定。计算基质效应。见表2。

2.5 稳定性实验

制备川楝素浓度为3.06、122.40、204.00 ng/mL的血浆样品各6份,分别在25℃室温放置24 h、4℃冰箱放置7 d、-20℃冰箱反复融冻3次,处理后进样。结果显示血浆样品稳定性良好。见表3。

2.6 药代动力学实验

按照“1.6”項下方法采集并处理血浆样品,“1.5”项下液质条件进样分析,采用DAS 2.0软件计算药代动力学参数。与低剂量组、中剂量组比较,高剂量组Cmax和AUC(0~t)升高,CLz/F、Vz/F降低,差异有统计学意义(P < 0.05),见表4。绘制浓度-时间曲线(C-T曲线),见图3。

3 讨论

实验考察了不同方法提取大鼠血浆样本中川楝素,因川楝素在有机溶剂中溶解度较高,因此比较了用乙酸乙酯萃取血浆中川楝素、乙腈和甲醇沉淀血浆蛋白的提取回收率,最后选择提取回收率最高的甲醇沉淀法处理血浆样品,并且经验证该方法稳定可靠。实验建立了LC-MS法测定大鼠体内川楝素含量的方法,能够将川楝素的色谱峰分离,能反映样品的真实性,并且经验证所建方法简便、准确、灵敏。在计算的过程中,由于川楝素化学结构中存在醛- 酮式结构的互变[21-24],因此在色谱图中出现双峰,依据药典以双峰面积之和计算。

川楝子不同给药剂量的药代动力学参数结果显示低、中、高3种剂量(15、30、60 g生药/kg)给药后MRT(0~∞)没有明显变化,Cmax,AUC(0~t),以及CLz/F和Vz/F差异均有统计学意义。随给药剂量的增大,AUC(0~t)与剂量比例不成正比,说明川楝素在大鼠体内为非线性动力学过程。中剂量组的AUC(0~t)是低剂量组的1.4倍,高剂量组的AUC(0~t)明显高于低、中剂量组,分别是中剂量组的4.4倍,低剂量组的6.2倍,说明大鼠给药剂量超过30 g生药/kg后,川楝素的生物利用度会大幅度提高,药代动力学过程异常。15、30 g生药/kg两组间比较,随给药剂量CLz/F增大1.4倍,说明肝肾清除川楝素功能正常,但是60 g生药/kg给药后CLz/F清除率显著降低,说明机体清除川楝素的能力降低,提示该剂量时肝肾代谢和排泄功能可能受损,机体内川楝素蓄积,与川楝子造成肝毒性有一定关系。因此,通过其改变川楝素在大鼠体内的药代动力学过程能够改善川楝子所致肝毒性。

[参考文献]

[1]  董庆海,李雅萌,吴福林,等.川楝子的研究进展[J].特产研究,2018,40(1):63-68.

[2]  李振华,鞠建明,华俊磊,等.中药川楝子研究进展[J].中国实验方剂学杂志,2015,21(1):219-223.

[3]  时等,刘妍如,杨建云,等.中药川楝子的最新研究进展[J].中国临床药理学与治疗学,2012,17(3):357-360.

[4]  张景珍,王英姿,李文华,等.川楝子炒制前后对大鼠在体肠吸收特性的影响[J].中医药学报,2018,46(3):24-27.

[5]  陈兵.川楝子的现代研究进展[J].中国中医药现代远程教育,2010,8(12):259-261.

[6]  谢肖锋.川楝子黄酮的提取和初步纯化[J].生物化工,2018,4(1):35-39.

[7]  张春泥,王英姿,张秀婷,等.川楝子的化学成分及质量控制方法研究进展[C]//中国商品学会.第四届中国中药商品学术大会暨中药鉴定学科教学改革与教材建设研讨会论文集,2015:4.

[8]  易林高,陈晓孩,何国鑫,等.头孢哌酮舒巴坦在重症监护病房脓毒症患者体内的药代动力学研究[J].中国医药导报,2018,15(10):34-37,41.

[9]  陈婷,黄晓会,陈霁晖,等.美罗培南在脓毒血症患者体内的药动学研究[J].中国医药,2017,12(4):603-606.

[10]  郭鹏,李琳琳,刘翔.中草药川楝子挥发油与微量元素的成分分析[J].大连民族大学学报,2017,19(3):212-215.

[11]  李文华,王英姿,骆声秀,等.川楝子炒制对长期给药大鼠肝肾毒性影响[J].辽宁中医药大学学报,2018,20(1):48-51.

[12]  彭心怡,倪锴文,丁阳阳,等.绞股蓝水提醇沉液抗川楝子致小鼠慢性肝损伤的实验研究[J].浙江中西医结合杂志,2018,28(10):818-820,825.

[13]  陈婷,黄晓会,陈霁晖,等.美罗培南在肾功能不全患者中的血药浓度监测结果及药动学研究[J].中国医药,2017, 12(6):920-924.

[14]  陈修平,王金华,杜冠华.川楝子毒的历史认识与现代研究[J].中药药理与临床,2018,34(4):189-191.

[15]  骆玮玮,陆金健,陈修平,等.川楝素的药理作用及机制研究进展[J].中药药理与临床,2016,32(4):161-164.

[16]  杨欢,赵学伟,胡楠.RP-HPLC法测定川楝子提取物中川楝素的含量[J].承德医学院学报,2015,32(5):447-448.

[17]  朱渊,王俊虎.UPLC-MS法快速测定川楝子中川楝素的含量[J].亚太传统医药,2018,14(4):54-56.

[18]  孙浠哲,吴倩倩,马文保,等.中药药代动力学研究进展[J].河北中医药学报,2018,33(5):52-55.

[19]  吕莉,孙慧君,韩国柱.中药药代动力学的研究进展[J].药学学报,2013,48(6):824-833.

[20]  丁黎,刘瑞娟.中药药代动力学研究的思与行[J].世界科学技术-中医药现代化,2017,19(7):1118-1131.

[21]  刘昌孝.中药药代动力学研究的难点和热点[J].药学学报,2005,40(5):395-401.

[22]  金若敏,齐双岩,符胜光,等.川楝子致大鼠肝毒性机制的研究[J].毒理学杂志,2007,33(4):300-301.

[23]  吴婷婷,杨科伟,余婷,等.磷酸川芎嗪不同给药方式在大鼠体内药代动力学的研究[J].成都医学院学报,2019, 14(1):35-39.

[24]  海芸,钟优艳,王琼,等.黄芪注射液对氨茶碱在大鼠体内药代动力学的影响[J].中国现代医生,2017,55(21):33-36.

(收稿日期:2019-05-17  本文编辑:刘永巧)

推荐访问:川楝子 提取物 动力学 体内 大鼠
上一篇:浅析30米级航标船加长改造对结构安全及总体性能的提升
下一篇:对比二维超声诊断老年冠心病颈动脉硬化的特征及血流动力学变化评价

Copyright @ 2009 - 2024 优泰范文网 All Rights Reserved

优泰范文网 版权所有 备案号:粤ICP备09201876号-1